Pipetinkärkien ja EP-putkien sterilointi jne.

1. Valmista 0,1 % (yksi tuhannesosa) DEPC:tä (erittäin myrkyllinen aine) deionisoidulla vedellä, käytä sitä varovasti vetokaapissa ja säilytä 4°C:ssa valolta suojassa;

DEPC-vesi on puhdasta vettä, joka on käsitelty DEPC:llä ja steriloitu korkeassa lämpötilassa ja paineessa.Testattu olevan vapaa RNaasista, DNaasista ja proteinaasista.

2. Aseta pipetin kärki ja EP-putki 0,1 % DEPC:hen ja varmista, että pipetin kärki ja EP-putki on täytetty 0,1 % DEP:llä.

3. Suojaa valolta, anna seistä yön yli (12-24h)

4. Kärjen ja EP-putken sisältävää laatikkoa ei tarvitse liottaa DEPC:ssä.Kun olet poistanut karkeasti DEPC-veden kärjestä tai EP-putkesta, pakkaa se ja kääri se.

5. 121 celsiusastetta, 30 min

6. 180 celsiusastetta, kuivaa useita tunteja (vähintään 3 tuntia)

Huomautus: a.Käytä lateksikäsineitä ja -naamioita käsitellessäsi DEPC:tä!b, tai ilman DEPC-sterilointia, 130 ℃, 90 min autoklaavi (monissa laboratorioissa korkean lämpötilan sterilointi kahdesti)

RNA:n uuttamista koskevat näkökohdat

Kaksi pääasiallista kudos-RNA:n eristyksen epäonnistumista

RNA:n hajoaminen ja epäpuhtauksien jäämät kudoksissa,Mitä tulee hajoamiseen, katsotaanpa ensin, miksi viljellyistä soluista uutettu RNA ei hajoa helposti.Kaikki olemassa olevat RNA-uuttoreagenssit sisältävät komponentteja, jotka estävät nopeasti RNaasia.Lisää lysaatti viljeltyihin soluihin ja yksinkertaisesti sekoita se, kaikki solut voidaan sekoittaa perusteellisesti lysaatin kanssa ja solut hajoavat kokonaan.Sen jälkeen kun solut on hajotettu, lysaatin aktiiviset aineosat inhiboivat välittömästi solunsisäistä RNaasia, joten RNA pysyy ehjänä.Toisin sanoen, koska viljellyt solut saatetaan helposti ja täydellisesti kosketukseen lysaatin kanssa, niiden RNA ei hajoa helposti;toisaalta kudoksen RNA hajoaa helposti, koska kudoksen solut eivät ole helppoja saada nopeasti kosketukseen lysaatin kanssa.riittävän kontaktin takia.Niin,Olettaen, että on olemassa tapa muuttaa kudos yhdeksi soluksi samalla kun se inhiboi RNA:n toimintaa, hajoamisongelma voitaisiin ratkaista täysin.

Nestemäisen typen jauhatus on tehokkain tällainen menetelmä.Nestemäisen typen jauhatusmenetelmä on kuitenkin erittäin hankala, varsinkin kun näytteiden määrä on suuri.Tästä syntyi seuraavaksi paras asia: homogenisaattori.Thehomogenisaattorimenetelmä ei ota huomioon kysymystä siitä, kuinka RNaasi-aktiivisuus inhiboituu ennen kuin solut saatetaan kosketukseen lysaatin kanssa, vaan pikemminkin rukoilee, että kudosten hajoamisnopeus on nopeampi kuin nopeus, jolla solunsisäinen RNaasi hajottaa RN:ää.

Sähköhomogenisaattorin vaikutus on parempi,ja lasihomogenisaattorin vaikutus on huono, mutta yleensä homogenisaattorimenetelmä ei pysty estämään hajoamisilmiötä.Siksi, jos uutto on huonontunut, alkuperäistä sähköhomogenisaattoria tulisi käyttää jauhamiseen nestemäisellä typellä;alkuperäinen lasihomogenisaattori on vaihdettava sähköhomogenisaattoriin tai jauhettava suoraan nestetypellä.Ongelma on lähes 100% mahdollista.ratkaista.

Myöhempiin kokeisiin vaikuttavalla epäpuhtausjäämäongelmalla on monimuotoisempia syitä kuin hajoamisessa, ja ratkaisut ovat vastaavasti erilaisia.Tiivistettynä,jos kudoksessa on hajoamista tai jäännösepäpuhtauksia, uuttamismenetelmä/reagenssi on optimoitava tietylle koemateriaalille.Sinun ei tarvitse käyttää arvokkaita näytteitäsi optimointiin: voit ostaa markkinoilta pieniä eläimiä, kuten kalaa/kanaa, ottaa vastaavan osan materiaalista RNA:n uuttamiseen ja toisen osan proteiinien erottamiseen – jauhaa suun, mahan ja suolen kanssa Uute.

Uutetun RNA:n kohde-RNA:ta käytetään erilaisiin seurantakokeisiin ja sen laatuvaatimukset ovat erilaiset

cDNA-kirjaston rakentaminen vaatii RNA:n eheyden ilman entsyymireaktion estäjien jäämiä;Northern vaatii korkeampaa RNA:n eheyttä ja pienempiä vaatimuksia entsyymireaktion inhibiittoritähteille;RT-PCR ei vaadi liian korkeaa RNA:n eheyttä,mutta estää entsyymireaktioita.Jäännösvaatimukset ovat tiukat.Tulo määrittää lähdön;aina kun tavoitteena on saada mahdollisimman puhdasta RNA:ta, se maksaa ihmisille ja rahaa.

Näytteiden kerääminen/varastointi

Hajoamiseen vaikuttavat tekijät Kun näyte lähtee elävästä kehosta/tai alkuperäisestä kasvuympäristöstä, näytteen endogeeniset entsyymit alkavat hajottaa RNA:ta,ja hajoamisnopeus liittyy endogeenisten entsyymien pitoisuuteen ja lämpötilaan.Perinteisesti on vain kaksi tapaa estää täysin endogeeninen entsyymiaktiivisuus: lisätä välittömästi lysaattia ja homogenoida perusteellisesti ja nopeasti;leikkaa pieniksi paloiksi ja pakasta välittömästi nestetypessä.Molemmat menetelmät vaativat nopeaa toimintaa.Jälkimmäinen soveltuu kaikille näytteille, kun taas edellinen vain kudoksille, joissa on vähän soluja ja endogeenisiä entsyymejä ja jotka on helpompi homogenoida.Erityisesti kasvikudos, maksa, kateenkorva, haima, perna, aivot, rasva, lihaskudos jne. on parasta jäädyttää nestemäisellä typellä ennen jatkamista.

Näytteiden fragmentointi ja homogenointi

Hajoamiseen ja tuottoon vaikuttavat tekijät Näytteen pirstoutuminen onperusteellista homogenisointia varten, joka on tarkoitettu RNA:n täydelliseen ja täydelliseen vapautumiseen.Solut voidaan homogenoida suoraan niitä rikkomatta.Kudokset voidaan homogenoida vasta murtamisen jälkeen.Hiiva ja bakteerit on rikottava vastaavilla entsyymeillä ennen kuin ne voidaan homogenoida.Kudokset, joilla on pienempi endogeeninen entsyymipitoisuus ja helpompi homogenisoida, voidaan murskata ja homogenoida kerralla lysaatissa homogenisaattorilla;kasvikudos-, maksa-, kateenkorva-, haima-, perna-, aivo-, rasva-, lihaskudos- ja muut näytteet, joissa on joko paljon endogeenisiä entsyymejä tai niitä ei ole helppo homogenoida,joten kudosten hajottaminen ja homogenointi on suoritettava erikseen.Luotettavin ja tuottavin fragmentointimenetelmä on jauhatus nestetypellä, ja luotettavin homogenointimenetelmä on sähköhomogenisaattorin käyttö.Erityishuomautus nestetypellä jauhamisesta: näytettä ei saa sulattaa koko jauhatusprosessin ajan, koska endogeeniset entsyymit toimivat todennäköisemmin jäätyessään.

Lysaatin valinta

Käyttömukavuuteen ja endogeenisten jäännösepäpuhtauksien tekijöihin vaikuttaminen Yleisesti käytetyt lyysiliuokset voivat melkein estää RNaasin aktiivisuuden.Siksi lyysiliuoksen valinnan avainkohta on harkita yhdessä puhdistusmenetelmän kanssa.On yksi poikkeus:näytteille, joissa on korkea endogeeninen entsyymipitoisuus, suositellaan käyttämään fenolia sisältävää lysaattia endogeenisten entsyymien inaktivointikyvyn lisäämiseksi.

Puhdistusmenetelmän valinta

Tekijät, jotka vaikuttavat jäännösendogeenisiin epäpuhtauksiin, uuttonopeus Puhtaille näytteille, kuten soluille, voidaan saada tyydyttäviä tuloksia lähes kaikilla käytettävissä olevilla puhdistusmenetelmillä.Mutta monille muille näytteille, erityisesti sellaisille, joissa on paljon epäpuhtauksia, kuten kasveja, maksa, bakteereja jne., sopivan puhdistusmenetelmän valinta on ratkaisevan tärkeää.Pylvään keskipakopuhdistusmenetelmällä on nopea uuttonopeus ja se voi poistaa tehokkaasti epäpuhtaudet, jotka vaikuttavat RNA:n myöhempään entsymaattiseen reaktioon, mutta se on kallista (Foregene voi tarjota kustannustehokkaita sarjoja, lisätietoja napsauttamallatässä);taloudellisilla ja klassisilla puhdistusmenetelmillä, kuten LiCl-saostuksella, voidaan myös saada tyydyttäviä tuloksia, mutta toiminta-aika on pitkä..

"Kolme tieteenalaa ja kahdeksan huomiota" RNA:n erottamiseen

Kuri 1:Tehkää loppu eksogeenisten entsyymien saastumiselle.

Huomautus 1:Käytä tiukasti naamioita ja käsineitä.

Muistio 2:Kokeeseen osallistuvat sentrifugiputket, kärkipäät, pipettitangot, elektroforeesisäiliöt ja koepenkit tulee hävittää perusteellisesti.

Huomautus 3:Kokeeseen osallistuvien reagenssien/liuosten, erityisesti veden, on oltava RNaasivapaita.

Kuri 2:Estää endogeenisten entsyymien toiminnan

Huomautus 4:Valitse sopiva homogenointimenetelmä.

Huomautus 5:Valitse sopiva lysaatti.

Huomautus 6:Hallitse näytteen lähtömäärää.

Kuri 3:Selvitä poiston tarkoitus

Huomautus 7:Kun mikä tahansa lysaattijärjestelmä lähestyy näytteen enimmäismäärää, uuton onnistumisprosentti laskee jyrkästi.

Huomautus 8:Ainoa taloudellinen kriteeri onnistuneelle RNA-uutolle on menestys myöhemmissä kokeissa, ei saanto.

10 parasta RNaasi-kontaminaation lähdettä

1. Sormet ovat ensimmäinen eksogeenisten entsyymien lähde, joten käsineitä on käytettävä ja vaihdettava usein.Lisäksi on käytettävä naamioita, sillä hengitys on myös tärkeä entsyymien lähde.Lisäetuna hansikasmaskin käyttämisestä on kokeen tekijän suojaaminen.

2. Pipetinkärjet, sentrifugiputket, pipetit – RNaasia ei voi inaktivoida pelkästään steriloimalla, joten pipetin kärjet ja sentrifugiputket tulee käsitellä DEPC:llä, vaikka ne olisi merkitty DEPC-käsitellyiksi.On parasta käyttää erikoispipettiä, pyyhkiä se 75-prosenttisella alkoholipitoisella puuvillapallolla ennen käyttöä, erityisesti sauva;lisäksi älä käytä päänpoistoainetta.

3. Vedessä/puskurissa ei saa olla RNaasi-kontaminaatiota.

4. Ainakin testipöytä tulee pyyhkiä puhtaaksi 75 % alkoholipitoisilla puuvillapalloilla.

5. Endogeeninen RNaasi Kaikki kudokset sisältävät endogeenisiä entsyymejä, joten kudosten nopea jäädyttäminen nestemäisellä typellä on paras tapa vähentää hajoamista.Nestemäisen typen varastointi/jauhatusmenetelmä on todellakin hankala, mutta se on ainoa tapa kudoksille, joissa on paljon endogeenisiä entsyymejä.

6. RNA-näytteet RNA:n uuttotuotteet voivat sisältää jälkiä RNaasi-kontaminaatiosta.

7. Plasmidiuutto Plasmidiuutossa käytetään usein Rnaasia hajottamaan RNA:ta, ja jäljelle jäänyt Rnaasi tulisi pilkkoa Proteinaasi K:llä ja uuttaa PCI:llä.

8. RNA:n varastointi Vaikka sitä säilytettäisiin alhaisessa lämpötilassa, pienet määrät RNaasia aiheuttavat RNA:n hajoamista.Paras ratkaisu RNA:n pitkäaikaiseen säilytykseen on suola/alkoholisuspensio, koska alkoholi estää kaiken entsymaattisen toiminnan matalissa lämpötiloissa.

9. Kun kationit (Ca, Mg) sisältävät näitä ioneja, kuumentaminen 80 °C:ssa 5 minuuttia aiheuttaa RNA:n pilkkoutumisen, joten jos RNA:ta on kuumennettava, säilytysliuoksen tulee sisältää kelatoivaa ainetta (1 mM natriumsitraatti, pH 6,4).

10. Myöhemmissä kokeissa käytetyt entsyymit voivat olla RNaasin saastuttamia.

10 vinkkiä RNA:n erottamiseen

1: Estä nopeasti RNaasi-aktiivisuus.Näytteet jäädytetään nopeasti keräämisen jälkeen, ja RNaasi inaktivoituu nopealla toiminnalla lyysin aikana.

2: Valitse sopiva uuttomenetelmä kudokselle, jossa on runsaasti ribotsyymiä, ja rasvakudoksessa on parasta käyttää fenolia sisältävää menetelmää.

3: Ennusteen laatu vaatii pohjoista, cDNA-kirjaston rakentaminen vaatii korkeaa eheyttä, ja RT-PCR ja RPA (ribonukleaasisuojausmääritys) eivät vaadi korkeaa eheyttä.RT-PCR vaatii korkean puhtauden (entsyymi-inhibiittoritähteet).

4: Perusteellinen homogenointi on avain sadon parantamiseen ja hajoamisen vähentämiseen.

5: Tarkista RNA-elektroforeesitunnistuksen eheys, 28S: 18S = 2:1 on täydellinen merkki, 1:1 on myös hyväksyttävä useimmissa kokeissa.

6: DNA:n poisto RT-PCR:ää varten, array-analyysi DNA:n poistamiseen on parasta käyttää Dnaasi I:tä.

7: Vähennä eksogeenisten entsyymien saastumista – entsyymejä ei voida tuoda ulkopuolelta.

8: Väkevöitettäessä matalapitoisuutta sisältävää nukleiinihappoa on lisättävä yhteissaostusreagenssia.Mutta estämään entsyymejä sisältävän yhteissaostin ja DNA:n saastumisen.

9: Liuota RNA perusteellisesti, tarvittaessa kuumenna 65 °C:ssa 5 minuuttia.

sopiva säilytystapa

Sitä voidaan säilyttää –20C:ssa lyhyen aikaa ja –80C:ssa pitkään.Ensimmäinen askel RNA-saatojen parantamisessa on ymmärtää, että eri näytteiden RNA-pitoisuus vaihtelee suuresti.Suuri määrä (2-4 ug/mg), kuten maksa, haima, sydän, keskimääräinen runsaus (0,05-2 ug/mg), kuten aivot, alkio, munuaiset, keuhkot, kateenkorva, munasarja, alhainen määrä (<0,05 ug/mg) mg), kuten virtsarakko, luu, rasva.

1: Lyysaa solut vapauttamaan RN – jos RNA:ta ei vapauteta, saanto vähenee.Sähköhomogenointi toimii paremmin kuin muut homogenointimenetelmät, mutta se voi olla tarpeen myös yhdistää muihin menetelmiin, kuten nestemäisen typen mäskaaminen, entsymaattinen pilkkominen (lysotsyymi/lytaasi)

2: Uuttomenetelmän optimointi.Fenolipohjaisten menetelmien suurimmat ongelmat ovat epätäydellinen kerrostuminen ja osittainen RNA:n menetys (supernatanttia ei voida poistaa kokonaan).Epätäydellinen kerrostuminen johtuu korkeasta nukleiinihappo- ja proteiinipitoisuudesta, joka voidaan ratkaista lisäämällä käytetyn lysaatin määrää tai vähentämällä näytteen määrää.Kloroformiuuttovaihe lisättiin rasvakudokseen.RNA-häviötä voidaan vähentää takaisinpumppaamalla tai poistamalla orgaaninen kerros ja sen jälkeen sentrifugoimalla.Suurin ongelma kolonnisentrifugointiin perustuvissa menetelmissä on ylimääräinen näyte.

Klassiset uuttovinkit

1. Fenolipuhdistus: Lisää sama tilavuus 1:1 fenoli/kloroformia ja sekoita voimakkaasti 1-2 minuuttia.Sentrifugoi suurella nopeudella 2 minuuttia.Poista supernatantti varovasti (80-90 %).Älä koskaan mene keskikerrokseen.Sama tilavuus reaktioliuosta voidaan lisätä fenoli/kloroformiin ja supernatantti poistaa.Kaksi supernatanttia voidaan sekoittaa keskenään nukleiinihapposaostusta varten saannon parantamiseksi.Älä ole liian lempeä sekoittaessasi, äläkä yritä poistaa kaikkea supernatanttia.

2. Pesu 70-80 % etanolilla: Pesun aikana nukleiinihappo on suspendoitava sen varmistamiseksi, että jäännössuola huuhtoutuu pois.Samanaikaisesti sentrifugoi heti etanolin pois kaatamisen jälkeen suurella nopeudella muutaman sekunnin ajan ja poista jäljelle jäänyt etanoli pipetillä.Liuota huoneenlämmössä 5-10 minuutin seisottamisen jälkeen.

11. Erityisorganisaatioiden purkaminen

1. Kuitukudos: Avain RNA:n erottamiseen kuitukudoksesta, kuten sydän-/luurankolihaksesta, on kudoksen hajottaminen kokonaan.Näillä kudoksilla on alhainen solutiheys, joten RNA:n määrä kudoksen painoyksikköä kohden on alhainen, ja on parasta käyttää mahdollisimman paljon lähtömäärää.Muista jauhaa kudos perusteellisesti pakkasolosuhteissa.

2. Kudokset, joissa on korkea proteiini-/rasvapitoisuus: aivo-/kasvirasvapitoisuus on korkea.PCI-uuton jälkeen supernatantti sisältää valkoisia hiutaleita.Supernatantti on uutettava uudelleen kloroformilla.

3. Kudokset, joissa on korkea nukleiinihappo-/ribotsyymipitoisuus: pernassa/kateenkorvassa on korkea nukleiinihappo- ja ribotsyymipitoisuus.Kudosten jauhaminen jäätymisolosuhteissa, jota seuraa nopea homogenointi, voi tehokkaasti inaktivoida ribotsyymit.Kuitenkin, jos lysaatti on liian viskoosia (korkean nukleiinihappopitoisuuden vuoksi), PCI-uutto ei pysty kerrostumaan tehokkaasti;lisäämällä lysaattia voi ratkaista tämän ongelman.Useat PCI-uutot voivat poistaa enemmän jäännös-DNA:ta.Jos valkoinen sakka muodostuu välittömästi alkoholin lisäämisen jälkeen, se osoittaa DNA-kontaminaation.Uudelleenuutto happamalla PCI:llä liukenemisen jälkeen voi poistaa DNA-kontaminaation.

4. Kasvikudos: Kasvikudos on monimutkaisempaa kuin eläinkudos.Yleensä kasvit jauhetaan nestemäisen typen olosuhteissa, joten RNA:n hajoaminen endogeenisten entsyymien vaikutuksesta on harvinaista.Jos hajoamisongelmaa ei ratkaista, se johtuu lähes varmasti näytteen sisältämistä epäpuhtauksista.Monien kasvien sisältämät epäpuhtaudet johtavat jäämiin, ja jäämien syynä on usein se, että näillä epäpuhtauksilla on joitain yhtäläisyyksiä RNA:n kanssa: sinä saostut ja minä saostun, sinä adsorboin ja minä adsorboin.Nämä ominaisuudet määräävät, että ne ovat erittäin vahvoja entsyymi-inhibiittoreita.

Tällä hetkellä kaupallisia RNA:n uuttoreagensseja voidaan mukauttaa lähes kaikkiin eläinkudoksiin pienillä säädöillä, mutta kaupallisia RNA:n uuttoreagensseja, jotka soveltuvat useimpiin kasvikudoksiin, on vähän.Onneksi Foregene voi tarjota erityisiäkasvin RNA:n uuttosarjat, meillä onPlant Total RNA Isolation Kit, Plant Total RNA Isolation Kit Plus.Jälkimmäinen on suunniteltu erityisesti kasveille, joissa on korkea polysakkaridi- ja polyfenolipitoisuus.RNA:n erottamisen osalta laboratoriokäyttäjien palaute on erityisen hyvää.

12. Näytteen jäädyttämisen ja sulatuksen vaikutus Pakastettu näyte voi olla suurempi, ja se on leikattava ennen RNA-uuttoon käyttämistä.Näytteillä on taipumus sulaa (mahdollisesti osittain) leikkaamisen aikana.Pakastetut näytteet on ehkä punnittava ennen RNA:n uuttamista, ja sulaminen tapahtuu varmasti tämän prosessin aikana.Joskus näytteen sulaminen tapahtuu myös nestemäisen typen jauhatusprosessin aikana;tai jäädytetty näyte lisätään suoraan lysaattiin ilman nestetyppijauhatusta, ja sulaminen tapahtuu varmasti ennen täydellistä homogenointia.Kokeet ovat osoittaneet, että jäädytetty kudos on alttiimpi RNA:n hajoamiselle sulatuksen aikana kuin tuore kudos.Todennäköinen syy: Jäädytys-sulatusprosessi rikkoo solun rakenteita, mikä helpottaa endogeenisten entsyymien joutumista suoraan kosketukseen RNA:n kanssa.

13. RNA:n laadun arviointi Yleensä elektroforeesia käytetään arvioimaan RNA:n eheyttä ja A260/A280:aa RNA:n puhtauden arvioimiseen.Teoriassa ehjän RNA:n suhde on 28S:18S = 2,7:1, ja suurin osa tiedoista korostaa suhdetta 28S:18S = 2:1.Tosiasia on, että melkein mikään muista näytteistä kuin soluista uutettu RNA ei ole suhteessa 2:1 (tämä saatiin käyttämällä Agilent Bioanalyzer -laitetta).

RNA:n elektroforeesituloksiin vaikuttavat monet tekijät, mukaan lukien sekundaarirakenne, elektroforeesiolosuhteet, näytemäärä, EB:n kyllästysaste jne. Käytä natiivia elektroforeesia RNA:n havaitsemiseen ja DNA-markkerin käyttöä kontrollina.Jos 28S 2 kb:lla ja 18S 0,9 kb:lla ovat selkeitä ja 28S: 18S > 1, eheys voi täyttää useimpien myöhempien kokeiden vaatimukset.

A260/A280 on ilmaisin, joka on aiheuttanut paljon sekaannusta.Ensinnäkin on tarpeen selventää tämän indikaattorin alkuperäinen merkitys nukleiinihapoille: puhdas RNA, sen A260/280 = noin 2,0.Puhdas RNA on "syy" ja A260/A280 = 2 on "vaikutus".Nyt kaikki käyttävät A260/A280:tä 'syynä' ja ajattelevat, että "jos A260/A280 = 2, niin RNA on puhdasta", mikä luonnollisesti johtaa sekaannukseen.

Jos olet kiinnostunut, voit lisätä RNA-näytteeösi vähän uuttamisessa usein käytettyä reagenssia, kuten fenolia, guanidiini-isotiosyanaattia, PEG:tä jne., ja mitata sitten A260/A280-suhde.Tosiasia on, että monet RNA:n uuttamiseen käytetyt reagenssit sekä monet näytteen epäpuhtaudet absorboivat noin A260:aa ja A280:aa, mikä vaikuttaa A260/A280:een.

Opettavin lähestymistapa tällä hetkellä on RNA-näytteiden skannaus alueella 200-300 nm.Puhtaan RNA:n käyrällä on seuraavat ominaisuudet: käyrä on tasainen, A230 ja A260 ovat kaksi käännepistettä, A300 on lähellä 0:ta, A260/A280 = noin 2,0 ja A260/A230 = noin 2,0.Jos skannaustietoja ei ole saatavilla, on myös määritettävä A260/A230-suhde, koska tämä suhde on herkempi kaikkien entsymaattiseen reaktioon vaikuttavien epäpuhtauksien siirtymiselle.Ota huomioon laitteen lineaarinen kantama (0,1–0,5 A260:lle).

On olemassa kaksi muuta hyödyllistä ilmiötä: suhde on noin 0,3 pienempi, kun A260/A280 mitataan vedessä;kun taas suhde mitattuna 10 mM EDTA:ssa on noin 0,2 suurempi kuin mitattuna 1 mM EDTA:ssa.

Liittyvät tuotteet:

China Plant Total RNA Isolation Kit valmistaja ja toimittaja |Foregene (foreivd.com)

RNA-eristyssarja Toimittajat ja tehdas |Kiinan RNA-eristyssarjan valmistajat (foreivd.com)

RNA-eristyssarja – Foregene Co., Ltd. (foreivd.com)